Diagnóstico parasitológico y de virus potencialmente zoonóticos en palomas domésticas (Columba livia) en tres localidades de Colombia
DOI:
https://doi.org/10.62059/LatArXiv.preprints.469Palabras clave:
Paloma domésticas, VNO, Influenza, Parásitos gastrointestinales, Hemoparásitos, Virus-RNAResumen
Las palomas domésticas (Columba livia) son reservorios de diversos agentes infecciosos, representando un riesgo para la salud pública. En Colombia, esta especie introducida es habitual en entornos urbanos, donde diversos estudios microbiológicos se han adelantado. Sin embargo, su papel en la circulación del Virus del Nilo Occidental (VNO) y la Influenza Aviar (IA) sigue siendo desconocido. Este estudio evaluó la presencia de enteroparásitos, hemoparásitos, así como la detección de VNO y VIA en palomas ferales capturadas en Bogotá, Arauca y Aguazul. Se recolectaron muestras fecales, de sangre, e hisopados orales y cloacales de 48 individuos. Los análisis parasitológicos incluyeron examen en fresco para parásitos gastrointestinales y tinción de Giemsa para hemoparásitos. La detección viral se llevó a cabo mediante RT-qPCR utilizando TaqMan y SYBR-Green. Los resultados indican la presencia de Haemoproteus columbae, junto a la presencia de diferentes endoparásitos que incluyen Eimeria, Blastocystis, entre otros para Arauca y Bogotá. Discutimos resultados de resultados obtenidos por pruebas moleculares para los virus potencialmente zoonóticos. Continuar con la vigilancia activa en especies sinantrópicas como está es imprescindible para establecer estrategias de prevención y control, en contextos urbanos, donde el contacto frecuente entre humanos y palomas puede facilitar la transmisión de microorganismos.
Referencias
Barbosa-Brugés P.A., Acero-Plazas V. M., Arenas N. E. (2021). Presencia de Escherichia coli con resistencia extendida a los antibióticos en paloma doméstica (Columba livia) en una localidad de Bogotá, Colombia. Revista de Ciencias agropecuarias, 26(2), 21-30. https://doi.org/10.36436/24223484.312
Blagodatski, A., Trutneva, K., Glazova, O., Mityaeva, O., Shevkova, L., Kegeles, E., Onyanov, N., Fede, K., Maznina, A., Khavina, E., Yeo, S.-J., Park, H., & Volchkov, P. (2021). Avian Influenza in Wild Birds and Poultry: Dissemination Pathways, Monitoring Methods, and Virus Ecology. Pathogens, 10(5), 630. https://doi.org/10.3390/pathogens10050630
Cano-Terriza D, Guerra R, Lecollinet S, Cerdà-Cuéllar M, Cabezón O, Almería S, García-Bocanegra I. Epidemiological survey of zoonotic pathogens in feral pigeons (Columba livia var. domestica) and sympatric zoo species in Southern Spain. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2015 Dec; 43:22-7. doi: 10.1016/j.cimid.2015.10.003. Epub 2015 Oct 21. PMID: 26616657.
Cárdenas Parra A.K., Barón Vera J. P., Calixto-Botía I.F., Matta N.E., Rodríguez-Fandiño O. A, Correa-Higuera L.J. A (2025) Broad Wildlife Survey of Influenza A Virus in the Orinoco Flooded Savannas from Colombia: New Reports and Perspectives. Animals, In press
Cepeda, A. S., Lotta-Arévalo, I. A., Pinto-Osorio, D. F., Macías-Zacipa, J., Valkiūnas, G., Barato, P., & Matta, N. E. (2019). Experimental characterization of the complete life cycle of Haemoproteus columbae, with a description of a natural host-parasite system used to study this infection. International Journal for Parasitology, 49(12), 975-984. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2019.07.003
Chagas, C. R. F., Guimarães, L. de O., Monteiro, E. F., Valkiūnas, G., Katayama, M. V., Santos, S. V., Guida, F. J. V., Simões, R. F., & Kirchgatter, K. (2016). Hemosporidian parasites of free-living birds in the São Paulo Zoo, Brazil. Parasitology Research, 115(4), 1443-1452. https://doi.org/10.1007/s00436-015-4878-0
Chancey, C., Grinev, A., Volkova, E., & Rios, M. (2015). The global ecology and epidemiology of West Nile virus. BioMed Research International, 2015, 376230. https://doi.org/10.1155/2015/376230
Chaves-Bedoya, Giovanni, Ortíz-Moreno, Martha Lucia, & Ortiz-Rojas, Luz Yineth. (2013). Efecto de la aplicación de agroquímicos en un cultivo de arroz sobre los microorganismos del suelo. Acta Agronómica, 62(1), 66-72.
Chiu, K., Warner, G., Nowak, R. A., Flaws, J. A., & Mei, W. (2020). The Impact of Environmental Chemicals on the Gut Microbiome. Toxicological Sciences: An Official Journal of the Society of Toxicology, 176(2), 253-284. https://doi.org/10.1093/toxsci/kfaa065
Chomel BB. Zoonoses. Encyclopedia of Microbiology. 2009:820–9. doi: 10.1016/B978-012373944-5.00213-3. Epub 2009 Feb 17. PMCID: PMC7149995.
Coral, A. A., Valkiūnas, G., González, A. D., & Matta, N. E. (2015). In vitro development of Haemoproteus columbae (Haemosporida: Haemoproteidae), with perspectives for genomic studies of avian haemosporidian parasites. Experimental Parasitology, 157, 163-169. https://doi.org/10.1016/j.exppara.2015.08.003
Danforth, M. E., Reisen, W. K., & Barker, C. M. (2016). The Impact of Cycling Temperature on the Transmission of West Nile Virus. Journal of Medical Entomology, 53(3), 681-686. https://doi.org/10.1093/jme/tjw013
De Marco, M. A., Delogu, M., & Cotti, C. (2023). Special Issue “Ecology of Influenza A Viruses”: Editorial. Microorganisms, 11, 1287. https://doi.org/10.3390/microorganisms11051287
Federación Nacional de Arroceros (FEDEARROZ) (2023). Boletín quinto censo nacional de arroceros 2023: segunda entrega. https://www.dane.gov.co/files/operaciones/CNA/bol-5toCNA-2daEntrega-2023.pdf
Gibbs, S. E. J., Hoffman, D. M., Stark, L. M., Marlenee, N. L., Blitvich, B. J., Beaty, B. J., & Stallknecht, D. E. (2005). Persistence of Antibodies to West Nile Virus in Naturally Infected Rock Pigeons (Columba livia). Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology, 12(5), 665-667. https://doi.org/10.1128/CDLI.12.5.665-667.2005
Góez-Rivillas, Y., Taborda, N., Díaz, F. J., Góngora, A., Rodas, J. D., Ruiz-Sáenz, J., & Osorio, J. E. (2010). Antibodies to West Nile virus in equines of Antioquia and Meta, Colombia, 2005-2008. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 23(4), 462-470.
Gómez-Beltrán, D. A., Montes, J. E. P., Villarl, D., Gómez-Beltrán, D. A., Montes, J. E. P., & Villarl, D. (2023). Impacto ecológico del insecticida fipronil: Valoración de riesgos en humanos. Revista de la Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, 70(1), 65-84. https://doi.org/10.15446/rfmvz.v70n1.100631
González-Acuña, D., Silva G, F., Moreno S, L., Cerda L, F., Donoso E, S., Cabello C, J., & López M, J. (2007). Detección de algunos agentes zoonóticos en la paloma doméstica (Columba livia) en la ciudad de Chillán, Chile. Revista chilena de infectología, 24(3), 199-203. https://doi.org/10.4067/S0716-10182007000300004
Haag-Wackernagel, D., & Moch, H. (2004). Health hazards posed by feral pigeons. The Journal of Infection, 48(4), 307-313. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2003.11.001
Habarugira, G., Moran, J., Colmant, A. M. G., Davis, S. S., O’Brien, C. A., Hall-Mendelin, S., McMahon, J., Hewitson, G., Nair, N., Barcelon, J., Suen, W. W., Melville, L., Hobson-Peters, J., Hall, R. A., Isberg, S. R., & Bielefeldt-Ohmann, H. (2020). Mosquito-Independent Transmission of West Nile virus in Farmed Saltwater Crocodiles (Crocodylus porosus). Viruses, 12(2), 198. https://doi.org/10.3390/v12020198
Heidecke J, Lavarello Schettini A, Rocklo ¨v J (2023) West Nile virus eco-epidemiology and climate change. PLOS Clim 2(5): e0000129. https://doi.org/10.1371/journal.pclm.0000129
Hernández-Martínez, M., Parra, J., Gongora, A., Walteros-Casas, H., & Chaparro Gutiérrez, J. (2021). Identificación de ecto y endoparásitos en palomas domésticas (Columba livia) del área urbana de Villavicencio, Meta, Colombia. Revista MVZ Córdoba, 26, e2157. https://doi.org/10.21897/rmvz.2157
Instituto Colombia Agropecuario (ICA).Influenza Aviar. https://www.ica.gov.co/getdoc/9cde2d77-673f-4225-9990-d67593ab4f36/influenza-aviar.aspx
Jiménez-Bluhm, P., Karlsson, E. A., Ciuoderis, K. A., Cortez, V., Marvin, S. A., Hamilton-West, C., Schultz-Cherry, S., & Osorio, J. E. (2016). Avian H11 influenza virus isolated from domestic poultry in a Colombian live animal market. Emerging Microbes & Infections, 5(12), e121. https://doi.org/10.1038/emi.2016.121
Kim CY, Oh H, Song J, Hur M, Suh JH, Jheong WH, Kim JT, Oh HS, Park JH. First detection of West Nile virus in domestic pigeon in Korea. J Vet Sci. 2016 Dec 30;17(4):587-589. doi: 10.4142/jvs.2016.17.4.587. PMID: 27030190.
Klenk, K., Snow, J., Morgan, K., Bowen, R., Stephens, M., Foster, F., Gordy, P., Beckett, S., Komar, N., Gubler, D., & Bunning, M. (2004). Alligators as West Nile Virus Amplifiers. Emerging Infectious Diseases, 10(12), 2150-2155. https://doi.org/10.3201/eid1012.040264
Komar, N., Langevin, S., Hinten, S., Nemeth, N., Edwards, E., Hettler, D., Davis, B., Bowen, R., & Bunning, M. (2003). Experimental infection of North American birds with the New York 1999 strain of West Nile virus. Emerging Infectious Diseases, 9(3), 311-322. https://doi.org/10.3201/eid0903.020628
Komar, N., Panella, N., Burns, J., Dusza, S., Mascarenhas, T., & Talbot, T. (2001). Serologic Evidence for West Nile Virus Infection in Birds in the New York City Vicinity During an Outbreak in 1999. Emerging infectious diseases, 7, 621-625. https://doi.org/10.3201/eid0704.010403
Kozdruń, W., Czekaj, H., & Stys, N. (2015). Avian zoonoses—A review. Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy, 59, 171-178. https://doi.org/10.1515/bvip-2015-0026
Lanciotti, R. S., & Kerst, A. J. (2001). Nucleic acid sequence-based amplification assays for rapid detection of West Nile and St. Louis encephalitis viruses. Journal of Clinical Microbiology, 39(12), 4506-4513. https://doi.org/10.1128/JCM.39.12.4506-4513.2001
Lanciotti, R. S., Kerst, A. J., Nasci, R. S., Godsey, M. S., Mitchell, C. J., Savage, H. M., Komar, N., Panella, N. A., Allen, B. C., Volpe, K. E., Davis, B. S., & Roehrig, J. T. (2000). Rapid detection of west nile virus from human clinical specimens, field-collected mosquitoes, and avian samples by a TaqMan reverse transcriptase-PCR assay. Journal of Clinical Microbiology, 38(11), 4066-4071. https://doi.org/10.1128/JCM.38.11.4066-4071.2000
LaDeauSL, Kilpatrick A.M., MarraP.P. West Nile virus emergence and large-scale declines of North American bird populations. Nature. 2007; 447: 710–713. https://doi.org/10.1038/nature05829
Liang, Y., & Dai, X. (2024). The global incidence and trends of three common flavivirus infections (Dengue, yellow fever, and Zika) from 2011 to 2021. Frontiers in Microbiology, 15, 1458166. https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1458166
Lorenz, C., de Azevedo, T. S., & Chiaravalloti-Neto, F. (2022). Impact of climate change on West Nile virus distribution in South America. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 116(11), 1043-1053. https://doi.org/10.1093/trstmh/trac044
Mansour, S. M. G., ElBakrey, R. M., Ali, H., Knudsen, D. E. B., & Eid, A. A. M. (2014). Natural infection with highly pathogenic avian influenza virus H5N1 in domestic pigeons (Columba livia) in Egypt. Avian Pathology: Journal of the W.V.P.A, 43(4), 319-324. https://doi.org/10.1080/03079457.2014.926002
Martínez Ramírez, J. L., Piña Parra, J. A., & Wilches Galindo, L. S. (2021). Identificación de Cryptosporidium spp en heces de paloma Columba livia en puntos críticos de concentración poblacional de palomas en la ciudad de Bogotá, Colombia. https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4753
Matta, N. E., Gaitán-Albarracín, F. A., Fuentes-Rodríguez, G. A., Rodríguez-Fandiño, Ó. A., Calixto-Botía, I. F., & Correa-Higuera, L. J. (2025). Survey of West Nile virus infection in wildlife species in the Orinoquia region of Colombia. Frontiers in Microbiology, 16, 1548538. https://doi.org/10.3389/fmicb.2025.1548538
Mattar, S., Edwards, E., Laguado, J., González, M., Alvarez, J., & Komar, N. (2005). West Nile Virus Antibodies in Colombian Horses. Emerging Infectious Diseases, 11(9), 1497-1498. https://doi.org/10.3201/eid1109.050426
National Biological Information Infrastructure (NBII), IUCN/SSC Invasive Species Specialist Group (ISSG). Global Invasive Species Database (2025) Species profile: Columba livia. Downloaded from http://www.iucngisd.org/gisd/species.php?sc=1052 on 01-05-2025.
Nebel, C., Harl, J., Pajot, A., Weissenböck, H., Amar, A., & Sumasgutner, P. (2020). High prevalence and genetic diversity of Haemoproteus columbae (Haemosporida: Haemoproteidae) in feral pigeons Columba livia in Cape Town, South Africa. Parasitology Research, 119(2), 447-463. https://doi.org/10.1007/s00436-019-06558-6
Osorio, J. E., Ciuoderis, K. A., Lopera, J. G., Piedrahita, L. D., Murphy, D., LeVasseur, J., Carrillo, L., Ocampo, M. C., & Hofmeister, E. (2012). Characterization of West Nile Viruses Isolated from Captive American Flamingoes (Phoenicopterus ruber) in Medellin, Colombia. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 87(3), 565-572. https://doi.org/10.4269/ajtmh.2012.11-0655
Perez-Garcia, J., Monsalve-Arcila, D., and Marquez-Villegas, C.(2015). Presencia de parásitos y enterobacterias en palomas ferales (Columba livia) en áreas urbanas en Envigado, Colombia. Rev. Fac. Nac. Salud Pública [online]. 33(3), .370-376. https://doi.org/10.17533/udea.rfnsp.v33n3a06.
Papin, J. F., Vahrson, W., & Dittmer, D. P. (2004). SYBR green-based real-time quantitative PCR assay for detection of West Nile Virus circumvents false-negative results due to strain variability. Journal of Clinical Microbiology, 42(4), 1511-1518. https://doi.org/10.1128/JCM.42.4.1511-1518.2004
Parsani, H., Momin, R., Lateef, A., & Shah, N. (2014). Gastro-intestinal helminths of pigeons ( Columba livia ) in Gujarat, India. Egyptian Journal of Biology, 16, 63. https://doi.org/10.4314/ejb.v16i1.9
Ramos, B. A., Chiang, J. O., Martins, L. C., Chagas, L. L. das, Silva, F. de A. E., Ferreira, M. S., Freitas, M. N. O., Alcantara, B. N. de, Silva, S. P. da, Miranda, S. A., Sepulvreda, B. A., Corrêa, L. T. G., Negrão, A. M. G., Vasconcelos, P. F. da C., & Casseb, A. do R. (2017). Clinical and serological tests for arboviruses in free-living domestic pigeons (Columba livia). Memorias Do Instituto Oswaldo Cruz, 112(8), 532-536. https://doi.org/10.1590/0074-02760170014
Rosselli, L. (2003). Aves de Colombia y el virus del Nilo occidental. Memorias, simposio internacional sobre el Virus del Nilo Ocidental y otras encefalitis equinas. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá, Colombia.
Matta, N. E. y Rodríguez, O. A. (2001). Hemoparásitos aviares Avian Haematoza. Acta Biológica Colombiana, 6(1), 27–34. https://revistas.unal.edu.co/index.php/actabiol/article/view/63464
Saborido Calderón, M. L. (2009). Daños que provocan las palomas. Revista de Clases historia, 6 (Septiembre), 5 Articulo N°39.
Scherf, B. & Food and Agriculture Organization of the United Nations (Eds.). (2000). World watch list for domestic animal diversity (3rd ed). Food and Agriculture Organization of the United Nations.
Smithburn, K. C., Hughes, T. P., Burke, A. W., & Paul, J. H. (1940). A Neurotropic Virus Isolated from the Blood of a Native of Uganda. The American Journal of Tropical Medicine, s1-20(4), 471-492. https://doi.org/10.4269/ajtmh.1940.s1-20.471
Spedicato, M., Carmine, I., Bellacicco, A. L., Marruchella, G., Marini, V., Pisciella, M., Di Francesco, G., Lorusso, A., Monaco, F., & Savini, G. (2016). Experimental infection of rock pigeons (Columba livia) with three West Nile virus lineage 1 strains isolated in Italy between 2009 and 2012. Epidemiology and Infection, 144(6), 1301-1311. https://doi.org/10.1017/S0950268815002642
Tomori, O., & Oluwayelu, D. O. (2023). Domestic animals as potential reservoirs of zoonotic viral diseases. Annual review of animal biosciences, 11(1), 33-55. https://doi.org/10.1146/annurev-animal-062922-060125
Uribe, M., & Florez, S. (2021).Presencia de endoparásitos y ectoparásitos con potencial zoonótico en palomas (Columba livia) de la plaza de Bolívar de la ciudad de Bogotá Colombia. Trabajo de grado Universidad Antonio Nariño. Repositorio institucional UAN. http://repositorio.uan.edu.co:8080/bitstream/123456789/2383/1/2020EmmanuelUrib
Valkiūnas, G., Iezhova, T.A. Keys to the avian Haemoproteus parasites (Haemosporida, Haemoproteidae). Malar J 21, 269 (2022). https://doi.org/10.1186/s12936-022-04235-1
Vargas, K., Vargas, F., Sierra Gaviria, E., Arias Hoyos, A., & Morantes, C. (2024). Agroquímicos y foto-fenton: Una revisión sistemática de los impactos socioambientales y parámetros óptimos de remoción de contaminantes Agrochemicals and photo-fenton: A systematic review of socio-environmental impacts and optimal contaminant removal parameters. Revista Novedades Colombianas, 19, 9-24. https://doi.org/10.47374/novcol.2024.v19.2422
Vasconcelos, R., Teixeira, R., Silva, I., Lopes, E., & Maciel, W. (2018). Feral pigeons (Columba livia) as potential reservoirs of Salmonella sp. And Escherichia coli. Arquivos do Instituto Biológico, 85. https://doi.org/10.1590/1808-1657000412017
Vázquez, A., Herrero, L., Negredo, A., Hernández, L., Sánchez-Seco, M. P., & Tenorio, A. (2016). Real time PCR assay for detection of all known lineages of West Nile virus. Journal of Virological Methods, 236, 266-270. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2016.07.026
Velasquez, M., Flórez, A., & Jaramillo Hernández, D. (2023). Influenza aviar de alta patogenicidad y sus saltos interfaces entre aves y mamíferos: Situación actual. Revista Sistemas de Producción Agroecológicos, 14, 65-84. https://doi.org/10.22579/22484817.988
Vilibic-Cavlek, T., Bogdanic, M., Savic, V., Hruskar, Z., Barbic, L., Stevanovic, V., Antolasic, L., Milasincic, L., Sabadi, D., Miletic, G., Coric, I., Mrzljak, A., Listes, E., & Savini, G. (2024). Diagnosis of West Nile virus infections: Evaluation of different laboratory methods. World Journal of Virology, 13(4), 95986. https://doi.org/10.5501/wjv.v13.i4.95986
Villalba-Sánchez, C., Ossa-Lacayo, A., & Velasquez, J. (2014). Columba livia domestica Gmelin, 1789: Plaga o símbolo. Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA, 6, 363. https://doi.org/10.24188/recia.v6.n2.2014.442
Webster, R. G., Bean, W. J., Gorman, O. T., Chambers, T. M., & Kawaoka, Y. (1992). Evolution and ecology of influenza A viruses. Microbiological Reviews, 56(1), 152-179. https://doi.org/10.1128/mr.56.1.152-179.1992
Zyrianova, I. M., & Zaripov, O. G. (2022). 18S ribosomal DNA-based PCR test for avian and mammalian DNA identification in meat products. Veterinary and Animal Science, 15, 100234. https://doi.org/10.1016/j.vas.2022.100234
Descargas
Descargas
PrePrint online
Categorías
Licencia
Derechos de autor 2025 Nubia Matta, Andrés Felipe Aponte-Gutiérrez, Lina Marcela Pérez Arenas, Felipe Andrés Gaitán Albarracín, Brayan Andrés Gamboa-Suárez, Jesús Alfredo Berdugo, Lady Johana Correa-Higuera, Angie Daniela González Galindo (Autor/a)
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Este preprint contiene la licencia informada y los derechos de autoría asociados. Una vez publicados en una revista asociada u otra editorial, la versión publicada asume las condiciones del nuevo entorno.
